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Plateforme d'Imagerie Photonique

Publié le 21 décembre 2022
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La plateforme de microscopie photonique de l’Institut de radiobiologie cellulaire et moléculaire (IRCM) met à la disposition des chercheurs du centre de Fontenay aux Roses les équipements nécessaires et les compétences techniques en microscopie photonique pour tout projet scientifique en sci​ences du vivant utilisant les techniques d'imagerie cellulaire.
Le personnel  fournit une assistance et une formation à la microscopie photonique, à l'acquisition et au traitement d'image
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​Lamya IRBAH

Responsable de la plateforme
Tél : +33 (0)1 46 54 89 73
lamya​.irbah@cea.fr


Secrétariat 

Aurélie GOURET
Tél : +33 (0)1 46 54 98 66
aurelie.gouret@cea.fr


​​Prestations

  • Les utilisateurs bénéficient d’une formation pratique à l’utilisation des microscopes.
  • Une assistance par le personnel dédié est assurée lors des acquisitions en cas de problème.
  • Une activité de conseil est proposée pour l’optimisation des expériences et l’analyse des données.
  • La sauvegarde des données sur un serveur dédié permet un haut niveau de confidentialité des résultats.

Offre technique

    • Etudes dynamiques sur le vivant
      • ​Imagerie spatio-temporelle jusqu'à 4 couleurs (5D) de l'échelle subcellulaire à tissulaire.
      • ​Mesure de vitesse de diffusion moléculaire (techniques de FRAP, photoactivation et photoconversion).
      • ​Etude cinétique de protéines de réparations après micro-dommages à l'ADN.
      • ​Mesure de temps de vie de fluorescence pour l'étude d'intéraction par FRET et d'activité enzymatique par l'utilisation de biosenseur.
    • Etudes d'échantillons fixés
      • ​Immuno-marquage multiples sur cellules ou sur tissus.
      • ​Acquisition des images en mosaïque et reconstruction de lame virtuelle.
      • ​Mesure de colocalisation.
      • ​​Reconstruction 3D.
​Equipements​
Microscope vidéo-confocal inversé Nikon A1

Equipé d'une chambre thermostatée avec contrôle de l'apport en O2 et CO2 pour les études sur les échantillons vivants. Platine motorisée x,y,z. Objectifs 10X, 20X, 40X et 60X équipés pour le DIC. Lasers 405nm, 457-477-488-514nm, 561nm, 638nm. Scanner tandem galvano/résonnant (30 images/sec).

Automatisation des acquisitions via le module JOBS pour notamment du criblage haut débit sur plaque 96 ou 384 puits, imagerie de résolution confocal avec objectifs de différents grossissements : 10,30,40,60,100X.

​Logiciel NIS-elements.


Nikon A1.png

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Microscope confocal inversé Leica SP8-FLIM​

Objectifs 20X, 40X et 63X équipés pour le DIC. Platine motorisée x,y,z. Lasers 405nm, laser blanc pulsé (choix de la longueur d’onde entre 470 et 670nm). Module FLIM pour la mesure de temps de vie de fluorescence. Détecteur hybride ultrasensible.
Logiciel LAS AF.




  • Leica SP8.png
Microscope confocal spining disk 

Equipé d’une chambre thermostatée avec contrôle de l’apport en O2 et CO2 pour les acquisitions d’images/ vidéo sur les échantillons vivants. Platine motorisé x,y,z, surplatine piezzo (1mm). Objectifs  20X,60x,40X et 100X  équipés pour les image en contraste interférentiel (DIC).  Lasers 405nm, 488nm, 561nm, 638nm. Caméra S-Cmos Prime 95. Module Live –SR, super résolution ainsi que module I-Las pour application diverses : FRAP, photo conversion, photo activation, photo-damage…Logiciel de pilotage Metamorph.
Confocal.jpg


Un poste de traitement et d'analyses d'images

Logiciel  Volocity (3D), NIS elements (logiciel offline NIKON), ImageJ, Metamorph Offline, LASX offline (Logiciel Leica).


Accès - Réservations

Tous les nouveaux utilisateurs doivent se faire connaître auprès des ingénieurs de la plateforme afin d'être au mieux orientés et conseillés​. L'autorisation d'accès au planning de réservation est conditionnée par le suivi d'une formation obligatoire.​​​